Win7 64位系統下，Q5000 驅動程序軟件安裝流程

如果你的電腦系統是win7 64位（只限64位），你需要手動安裝Q5000驅動程序軟件，具體安裝步驟如下：

注意：安裝驅動程序軟件前，不要將Q5000與電腦連接

將CD光盤放進CD驅動器，打開文件夾“Q5000 Win7 (64) ……”，點擊“OmniDriver……”安裝驅動程序軟件；

用USB將Q5000和電腦連接（此時電腦驅動安裝錯誤提示），打開控制面板的設備管理器；

將鼠標箭頭移到帶黃色感嘆號的“Ocean Optics …..”上，按下鼠標右鍵，選擇“更新驅動程序軟件”；

在下面的提示中，選擇“瀏覽計算機以查找驅動程序軟件”；

在如下圖的提示框內，用“瀏覽(R)…”鍵，按照下面的路徑找出驅動程序軟件的文件夾：“C:\Program Files\Ocean Optics\OmniDriver”，然后點擊“下一步(N)”；

電腦自動安裝驅動程序軟件成功后，彈出下面的提示框，點擊“關閉(C)”，推出驅動程序軟件更新。

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美國Quawell超微量分光光度計

Q5000應用指南     文檔三

測核酸蛋白時的一些常用的小知識點

V1.0

2012－09

注：為了使Q5000用戶更好地使用我們的產品，本文提供了一些使用中常用的一些小知識點，幫助用戶更好的使用我們的產品。

方法如下：

根據吸光值的比值判斷核酸（DNA、RNA）純度：

核酸純度通常用260/280和260/230的值來評價。

DNA260/280

1）1.7~1.9：DNA比較純；

2）大于1.9：有可能有RNA污染或者DNA有降解；

3）小于1.7：有可能有蛋白質污染。

DNA 260/230

260/230是一個參考值，用戶可以通過這個值，大致了解DNA是否含鹽太高。這個值在什么范圍內屬于正常，沒有一個標準，需要用戶自己判斷。

   RNA 260/280

1）1.8~2.0：正常；

2）大于2.0：樣品可能有鹽殘留或者RNA有降解；

3）小于1.8：樣品可能有蛋白質或有機物污染。

RNA 260/230

1）2.0以上：正常；

2）小于2.0：樣品可能有鹽或者有機物污染。

可測核酸和蛋白的濃度范圍：

核酸：

dsDNA 0.5-5000ng/ul

蛋白：

0.05-100mg/ml(BSA)

如何測純度較差的樣品的濃度：

理論上，超微量分光光度計由于測的樣品量非常小，測純度低的樣品效果會比測純度高的樣品差一些，但是也可以根據一些方法測出純度低的樣品的大概濃度。

測之前，把樣品充分混合均勻，可以通過搖晃或離心或用移液器反復吸液放液。

測的時候，吸取位于溶液中部的樣品。

多測幾次，取比較接近的數值，測量結果就是這幾個接近的數值的平均值。

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Q5000應用指南  文檔二

日常維護保養指南

V1.0

2012－09
注：為了使Q5000用戶可以更好地維護和保養儀器，本文提供了一些在實際應用中行之有效的方法，參照這些方法，實驗人員可以使儀器在更長時間內正常穩定的工作。

除此之外，我們有專門的技術人員對儀器進行維護和校準，建議用戶每年把儀器送到技術人員處校準2次，購買后第一年的2次校準免費。


方法如下：

1.在每個樣品測量后盡快用干凈的紙擦干上下測試平臺殘留的樣品，防止樣品殘留在檢測平臺上。
2.每次使用完儀器后，都要對檢測平臺進行清潔，方法如下：把純水上樣到測試平臺，合上檢測臂，等3秒鐘，擦拭掉純水，然后再將上述步驟重復一遍。
此外，每隔一段時間最好用酒精擦拭一次，當儀器檢測平臺比較臟時也需要用酒精擦拭，儀器過臟會造成測量讀數不準確。
3.檢測平臺主要是不銹鋼及石英，請勿測量含腐蝕性的樣品，如HF。
4.在運輸、使用和存放的過程中注意不要壓到儀器上的光纖線。
5.長期不使用儀器時，每隔一段時間通電開一次機，可以起防潮作用。
6.長期不使用機器時，請蓋上防塵布或者防塵罩，以防灰塵積聚在檢測平臺上。
 

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Q5000應用指南 文檔一

如何提高低濃度樣品測量結果的準確性和穩定性   

V1.0  

2012－08  

注：為了提高Q5000用戶在測量低濃度樣品時的準確性，本文提供了一些在實際應用中行之有效的方法，參照這些方法，實驗人員可以有效提高測量低濃度樣品的準確性和穩定性。  

一般來講，我們將濃度在20ng/ul以下的樣品稱之為低濃度樣品，對于濃度在20ng/ul以上的樣品，參照本文的方法，對測量結果的準確度和穩定性也會有明顯幫助。

方法一：徹底清理測量平臺   

方法二：上樣及對樣品的要求

1.上樣時，樣品體積最好在2-5ul。

2.上樣以后，盡快放下測量臂，點measure 測量，減少樣品蒸發對測量結果造成的影響。

3.如果連續測了多種樣品，最好從低濃度樣品開始測，如果測低濃度樣品之前測了高濃度的樣品，需要用dd 水把檢測臺洗2次再進行測量。

4.提高樣品的純度，減小雜質產生的影響。

5.對于那些濃度均一性不好的樣品（比如細胞）或者多種溶液混合后的樣品（比如Bradford法用到的蛋白與考馬斯亮藍混合液）要將樣品充分搖勻再進行測量。